Rezepte für Medien
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In dieser Sammlung finden Sie:
Ampicillin | Agarplatten | Bacillus-Medium | IPTG | LB-Medium | X-Gal
Weitere Informationen zu Züchtungsmedien finden Sie bei den Mikroorganismen der DSMZ. Auch einige Handbücher von Lieferfirmen sind sehr informativ.
Antibiotikum Ampicillin (Amp)
- Stammlösung: 150 mg/ml demin. Wasser
Molekulargewicht 371,4 g/mol; Lieferfirma, Bestell-Nr: Fluka, 10044 - Verwenden Sie normalerweise das Natriumsalz. Haben Sie nur die freie Säure dann verfahren Sie wie folgt: Lösen Sie 150 mg Ampicillin mit 150 mg Natriumhydrogencarbonat in 1 ml sterilem demin. Wasser. Setzen Sie diese Lösung in einem Reagenzglas an, da es zu starker Schaumbildung kommen kann. Vortexen Sie die Lösung bis die Flüssigkeit klar geworden ist.
- Portionieren Sie die Amp-Lösung in Eppendorfgefäße und bewahren Sie diese Lösung bei –20 °C auf.
- Die Stammlösung darf nicht autoklaviert werden, da sie dadurch inaktiviert würde! Sterilfiltration mit 0,2 µm nominalem Porendurchmesser.
- Anwendung: 50-150 µg/ml Medium
Abbildung 1: Strukturformel von Ampicillin. Der rote Pfeil zeigt auf den beta-Lactamring und die Bindung, die durch das Enzym beta-Lactamase gespalten wird.
Bacillus-Medium | |
pH-Wert | 7,0 |
Konzentrierung | 1-fach, gebrauchsfertig |
Volumen | 100 ml |
Zusammensetzung: | Substanz | Menge | Molarität | Molekular- | Lieferfirma, Bestellnummer |
Stärke(Kartoffel) | 20,0 g | Fluka, 85650 | |||
NaCl(*) | 6,0 g | 1034 mM | 58,44 g/mol | Fluka, 71380 | |
Hefeextrakt | 0,5 g | Fluka, 09182 | |||
Agar | 1 g | Fluka, 10044 | |||
demin. Wasser | 100 ml | ||||
Herstellung: | Mit demin. Wasser auf 100 ml auffüllen, pH einstellen (2 M HCl oder 2 M NaOH) und autoklavieren für 20 min bei 121°C. | ||||
Anwendung: | C- und Energiequelle ist ein Polymer (Stärke), dass nur von Organismen mit Amylasen als Exoenzymen verwertet werden kann.(*) Die hohe Salzkonzentration dient der selektiveren Anreicherung von Bacillus subtilis. Die Konzentration kann für sonstige Züchtungen auf 0,6 g NaCl/100 ml Medium gesenkt werden. |
LB-Medium(häufig als Fertigmedium bezogen) | |
pH-Wert | 7,0 |
Konzentrierung | 1-fach, gebrauchsfertig |
Volumen | 1000 ml |
Zusammensetzung: | Substanz | Menge | Molarität | Molekular- | Lieferfirma, Bestellnummer |
Trypton | 10,0 g/l | -- | -- | Fluka, 95039 | |
NaCl | 10,0 g/l | 171 mM | 58,44 g/mol | Fluka, 71380 | |
Hefeextrakt | 5,0 g/l | -- | -- | Fluka, 09182 | |
Herstellung: | Mit demin. Wasser auf 1000ml auffüllen, pH einstellen (HCl oder NaOH je 2 M) und autoklavieren für 20 min bei 121°C. |
Für Agarplatten (feste Medien) wird dem flüssigen LB-Medium vor dem Autoklavieren 1,5 g Agar-Agar pro 100 ml zugesetzt. Sie erhalten damit den "normalen" 1,5%-igen Agar.
IPTG | |
Konzentrierung | 1-fach, gebrauchsfertig |
Volumen | 1 ml |
Zusammensetzung: | Substanz | Menge | Molarität | Molekular- | Lieferfirma, Bestellnummer |
IPTG | 30,0 mg/ml | 126 mM | 238,3 g/mol | Fluka, 59740 | |
Ethanol 100% | 1 ml | -- | 46,07 g/mol | Fluka, 02855 | |
Herstellung: | Bei -20°C aufbewahren. Für Blau-Weiß-Screening je 40 µl auf den Agarplatten ausplattieren. | ||||
Sicherheitsdatenblatt | IPTG, Ethanol |
- Isopropyl-beta-D-Thiogalactopyranosid (CAS 367-93-1)
- Medienkomponente zur Induktion der beta-Galaktosidase
X-Gal | |
Konzentrierung | 1-fach, gebrauchsfertig |
Volumen | 1 ml |
Zusammensetzung: | Substanz | Menge | Molarität | Molekular- | Lieferfirma, Bestellnummer |
X-Gal | 20,0 mg/ml | 49 mM | 408,6 g/mol | Fluka, 16665 | |
Dimethyl- | 1 ml | -- | 73,1 g/mol | Merck, 822275 | |
Herstellung: | Substanzen lösen und bei -20°C lichtgeschützt aufbewahren. | ||||
Anwendung: | Für Blau-Weiß-Screening je 40 µl auf einer Agarplatten mit einem Drigalskispatel ausplattieren. | ||||
Sicherheitsdatenblatt | X-Gal, Dimethylformamid |
- 5-Bromo-4-Chloro-3-Indolyl-beta-D-Galactopyranosid (CAS 7240-90-6)
- stabil bei -20°C im Dunkeln
- Eine aktive beta-Galaktosidase spaltet das Aglycon (5-Brom-4-Chlorindol) ab, das zu blauem Indigo (CAS 482-89-3) oxidiert wird.